A ku-láz laboratóriumi diagnosztikája
A Ku-láz (Q-febris) sokféle állat és ember természetes fókuszos rickettsialis betegsége. A farm állatok levágása, Levan halad viszonylag jóindulatú, de ki tudják szolgálni, mint a forrás a kórokozó az ember, aki a Q-láz nyilvánul etsya akut szisztémás fertőzés, általában együtt intersticiális tüdőgyulladás. A (szarvasmarha és a kis szarvasmarha, öszvérek, lovak, disznók, kutyák, csirkék), a betegség jellemzője az átmeneti láz kísérheti conjunctivitis, rhinitis, bronhop-nevmoniey, ízületi gyulladás, masztitisz, abortusz, heregyulladás.
A kórokozó átvitelét az állattól az állathoz fertőzött atkák (több mint 50 faj) vagy táplálékként lehet elvégezni.
A betegség kórokozója Coxiellaburneti, a Coxiella nemzetség. törzs Rickettsiae. A laboratóriumi diagnózis a bakteriológiai és szerológiai vizsgálatok eredményein alapul.
Bakteriológiai vizsgálat
In vivo vért vesz. Megfertőzni csirkeembrió elő mintákat, heparinnal kezelt vérből folyás a hüvely és a méh, a méhlepény esetében az abortusz, a minta a tejet a állati atkák; a tüdők, a lép lépékei, a tőgy parenchima, az agy, a regionális nyirokcsomók az érintett szervek számára.
A kiindulási anyag mikroszkópos vizsgálata, gyors diagnosztikai módszerek. A vizsgálati anyagból keneteket készítenek, amelyeket Romanovsko-mu, Hymenich és mások festenek (lásd "Chlamydia"). Pozitív esetekben a Romanovsky-színezésben a sejtek belsejében a C.psittaci-hoz hasonló, 0,2-0,4 μm-es vagy rövid rúdokat tartalmazó purin vörös csonka sejtek találhatók.
A szilárd fázisú ELISA szendvicsváltozatát használják a kórokozó antigén kimutatására a vizsgált anyagban. Az ELISA adatok az esetek 100% -ában egybeesnek a fehér egerek biológiai vizsgálatának eredményével. A kórokozó kimutatásához közel álló érzékenység a fluoreszcens antitestek módszere (közvetlen változat). Az anyagban lévő gerjesztő DNS detektálása hatékonyan PCR segítségével történik.
C.burneti kiosztása és azonosítása
A csirkeembriók termesztése. A nitrát vér alkalmas csirke embrió fertőzésre. Abban az esetben, egy lehetséges szennyeződésének idegen anyag mikroflóra TCA-Nevy homogenizátumot sóoldatban (1,10) kezeljük finom-tsillinom (1000 U / ml) és sztreptomicinnel (500ED / ml) 60 percig, hogy az ellenőrzési vetés MPA, MPB. 0,2-0,25 ml térfogatú szuszpenziót vagy nitrált vért viszünk be a tojássárgájába (lásd "Chlamydia"). 5-7 napos csirke embriókat használnak, 4-5 naptól kezdődően a tojást naponta neveljük. Az elesett embriók kinyílnak, miután meghaltak, 8 nap elteltével az élő embriók megnyitása megengedett. Negatív eredménnyel legfeljebb 4-6 "vak" járatot végeznek el. A rickettsia megtalálható a tojássárgája borítékában festett készítményekben vagy lumineszcens antitestek módszerével. Miután adaptáció MA törzsek csirke embriókat az embrionális szövetek lehet extraháljuk az antigén azonosítására és annak reakciók szerológiai immun syvorot kami elleni I és II fázis C.burneti.
A sejtek tenyésztése. A C.burneti termesztése csirkeembrió fibroblasztok, sárgabarack hámsejt, vese epitélium stb. Tenyészetében végezhető. A Rickettsia jól tenyésztik az FSC, a Ner-2, a CP, a PC, a TC, a SC, a csirke embriók tripszinizált sejtjeit. Az ötödik napon a fertőzött sejtkultúrákat megvizsgáltuk a festett kenetek mikroszkópiájával, a RIF és a PCR-ben.
Laboratóriumi állatok fertőzése. A szuszpenziót a kiindulási anyag (1: 5) volt antibiotikumokkal kezelik és intraperitoneálisan adagoltuk tengerimalacoknak 250-300 g súlyú dózisban 5,3 ml vagy nyulak. A tengerimalacok naponta hőmérőkkel vannak felszerelve, és akár 3-5 "vak" járatot is végeznek. Az állatok lázában halott vagy elpusztult a peritoneumból kaparni, tamponokat, mikroszkópiát készíteni, és megvizsgálni a RIF-ben. A fertőzés eredményeit a készítményben a rickettsia jelenléte bírálja el. Az állatok hosszú távú megfigyelése (35-40 nap) lehetővé teszi a DSC szérum véráramlásán alapuló diagnózist.