Steril szűrés - Kémiai Handbook 21
A finom szűrést és steril szűrése injekciós oldatokat alkalmazunk a gyógyszerészeti gyakorlatban különböző típusú membránok származó nitrocellulóz, nylon, polipropilén, teflon, és mások. [C.372]
Minden olyan gáz (sűrített, természetes, inert) érintkezésbe a gyártási folyamat során oldatok vagy más köztes termékek kell alávetni steriiszűrést. [C.363]
Ugyanakkor a széles körben elterjedt Ukrajnában és a FÁK országokban naschli külföldön igénybe szűri „Millipore”. Az ilyen szűrőlemezeket készült vékony cellulóz, teflon, polivinil-klorid, és nylon szálak, amelyek olyan tulajdonságokkal rendelkeznek steriiszűrést. Nem adszorbeált megoldásokat gyógyászati anyagok. [C.372]
Sterilizálást végezhetjük nedves hő (gőz) vagy száraz hővel (forró levegő), oxietilén vagy más alkalmas gáz-halmazállapotú sterilizáló, sterilizáló szűréssel a későbbi csomagoláshoz aszeptikus körülmények között, valamint a sugárzás. [C.379]
A legkiterjedtebb reorganizációja és előnyösen sterilizálására infúziós oldatok termikus sterilizálási módszerek (előírt elfogadhatóságát a termék), különösen gőz sterilizálás. A vizes készítmények - Módszer autoklávban. És vele együtt az utóbbi időben a módszer steriiszűrést. [C.379]
Használt a gyógyszeriparban többféleképpen sterilizálás hő, kémiai, sugárzás, steriiszűrést lehet előállítani megbízhatóan sterilizált gyógyszerek és orvosi eszközök. [C.743]
Előállítás feloldódjon az összes komponenst az elsődleges közeg és a 3 ml fenolvörös vizes oldat, és az oldatot autoklávban 15 percig. Hagyjuk agar lehűlni 50 ° C-on A karbamid-oldatot szűréssel sterilizáljuk és aszeptikus körülmények között hozzáadjuk 950 ml agar oldatot. a tápközeg pH legyen 6,8-0,1. A táptalajt szétosztjuk csövek 6 ml-enként, és lehűtjük ferde helyzetben. [C.406]
Azonban, meg kell otmettsr hogy minden oldatokat parenterális beadásra szánjuk, a nagy térfogatú, amely magában foglalja a-fúziós megoldásokat kell alávetni steriiszűrést. esetleg közvetlenül palackozás előtt hatóanyag-oldatot. [C.367]
Elvileg, a sterilizáló szűrési módszer ideális sterilizációs labilis, beleértve termikusan instabil folyékony és gáznemű közegek. mert lehet alacsony hőmérsékleten hajtjuk végre, és szükség a nyomás gradiens a membránon. Ez lehetővé teszi számunkra, hogy beszélni a nagy kilátásai membrán technológia sterilizálás, elsősorban folyékony közeg. A fő nehézség volt itt - jelenlétében hőálló membránok, amelyek elviselni ismételt termikus sterilizálására magukat a működés során, most sikeresen megoldotta széles [C.15]
A növényekben az enzim tisztítást végzünk a ultraszűrés. keringő szakaszos működés (ábra. 37). A kezdeti kapacitása bizonyos mennyiségű folyadék szivattyúzzák. a már továbbított biomassza elválasztási lépést sterilizálószűrés. Az utóbbi szükséges, hogy megakadályozza a fejlődését mikroflóra a membránok és a tisztító oldatot a finom üledék, amelyek szennyezhetik az a membrán felületével. Az oldatot folyamatosan hűtjük az edénybe, és egy ciklusban tulajdonságaitól függően az enzim a hőmérséklet 4-15 ° C-on Ennek eredményeként, a kiáramlás a membránon keresztül folyadékszint a tartályban folyamatosan csökkentjük rajta néha megítélni a folyamat végén. [C.129]
Cisztin feloldunk 0,7 g cisztein 100 ml 0,25 M HC1, szűréssel sterilizáljuk, és tároljuk fagyasztással kis részletekben. [C.293]
Különböző módszerek sterilizálás használjuk sterilitás eléréséhez PM (termikus, kémiai, sugárzás, és sterilre szűrés), és a mikrobiológiai szennyeződésének megelőzésére és szorzás - megőrzése adalékanyagok antimikrobiális (HF). Az utóbbi módszer különösen fontos olyan esetekben, amikor vyscheperechislennye sterilizálási módszerek bomlásához vezethet PM vagy technológiailag nehéz megvalósítani, valamint létre PM a csomagban, az úgynevezett multi-dózisú tartály (több visszakeresése dózisok). [C.363]
LIT tenyésztéséhez szükséges tápközeg Trypanosoma ruzi összetétele a következő (g / l) a máj kivonatot. nátrium- és kálium-kloridot - 4,0 nátrium-foszfát - 8,0, triptóz (tripton) - 5,0, glükóz - 2,0 g szarvasmarha vér - 200 ml. A tápközeget úgy inaktiváltuk, hogy 1 órán át 62 ° C-on Lehűlés után 20 ml hemoglobin (10ml kicsapjuk szarvasmarha-eritrocita + 90 ml desztillált víz), pH-ja a táptalajt úgy állítottuk be, hogy 7,2 és sterilizáljuk Seitz-szűrőn keresztül nagynyomású szűrőt. A kész közeget szétosztjuk csövek vagy Erlenmeyer lombikban 10 ml, amely beoltjuk egy csepp vizsgálati anyag és inkubáljuk 26 - 28 ° C-on, védő termények szárítás. [C.347]
Az összes pozitív tulajdonságait steriiszűrést membránokon keresztül kell jegyezni, és e módszer hátrányai. amelyek magukban részecskék tapadását a membránok, a pórus heterogenitását az átmérő ( „abszolút membrán sterilizáló hatékonyság nem létezik, de a sterilitás lehet elérni, és elérni miatt a szuperpozíció egyéb okok miatt. így például, adszorpciója a szemcséket a membrán), visszatartó rész sterilizálható drága folyadékot a membrán szűréssel kis térfogatú, csakúgy, mint egy lehetséges szelektív adszorpcióját az ionok (általában - kationok) a kis térfogatú oldatok, elégtelen vagy rossz vízzel való nedvesíthetőségét a membránokat, stb is p -bank sürgető a probléma a virális szennyeződés BAS és tisztítása biológiailag aktív anyagok a vírus helyzet kapcsolódó tisztítási biotermékek a vírusok, súlyosbít azért is, mert azt jelentették szennyeződése az emberi növekedési hormon. termelt az agyalapi mirigy, „lassú vírus betegségek Kreutz-Feld-Jakob-betegség, és ez ellen a háttérben a növekvő szerepét retrovírusok (beleértve a HIV) Ennek következtében - a megnövekedett élénkséget a gyógyszerek a vérből, hormonok kivont emlős szövetekben. rekombináns fehérjék. által képzett tenyésztett állati sejtek Továbbá számos állati vírus emberi kórokozók (zoonózis vírusos fertőzések) [c.256]
A technológia előállítására hemagglutinin influenza virionoknak következő felhalmozódott vírus anyag a allantois-folyadékot csirke embrió elválasztott vetjük alá mikroszűrés és szűrés koncentráljuk körülbelül 50-szer, ha szükséges, tovább tisztíthatjuk ultracentrifugálással egy szacharóz sűrűség-gradiens bepároljuk virion anyagot kezeljük egy kationos felületaktív anyagot, és elkülönítjük a hemagglutinin ultraszűréssel, majd dialízis és szűrés sterilizálás. Az utolsó szakaszban a szabványosított és ellenőrizni edinichnuyu vakcina (különösen - hiányában élő influenzavírusok). [C.486]
Termelés alapul fágok megfertőzni bakteriofágok érzékeny tenyészkultúráit bizonyos fajok és törzsek. „A növényzet fágok kíséretében lízis a bakteriális sejtek. Részben a nem lizált sejteket és a sejttörmeléket szabadulnak steriiszűrést. Fágokat átjutni a szűrőn, és a szűrleteket teszteltük hivatkozási tenyészetek az érzékeny baktériumok. [C.488]
Sartorius SM 16510 16308 Sai 5LG SJM 16268 16272 16230 SM SM 16225 Ploskokamernye 12,5 69,0 134,0 560,0 5000,0 2550,0 steriiszűrést. szétválasztás, koncentráció, tisztítás és gyógyászati készítmények biologiesknh [c.199]
Szelektív táptalajon. Mi inkább dolgozni a közepes hipoxantin -ase-szerin (GA) helyett gyakrabban használt közepes gipoksantnn / -amino pterins / timidin (HAT), amint az élénkebb sejtek növekedését a HA közegben. HA oldat formájában állítják elő a 100-szoros koncentrációjú feloldva 136 mg hipoxantin és azaszerin 10 mg 100 ml steril desztillált vízben. Az oldatot ezután szűréssel sterilizáljuk, és kis alikvotokban tároltuk -20 ° C-on [C.191]
Oldjunk 175,3 g Na l és NazTsitrat-2H20 800 ml ionmentesített vízben. Állítsuk be a pH-t 7,0-HC1. Ioncserélt vizet, hogy a térfogat 1 literre. A kapott oldatot avtokla-virovat vagy szűréssel sterilizáljuk 0,22 mikronos szűrőn. [C.219]
Laboratóriumi edények a víz alatti erjedés különböző méretűek lehetnek. Eltekintve a már említett nagy lombikok és palackok használt fermentorok térfogatú rozsdamentes acélból készült 50 l 10- [6]. Széles körben használt hengeres rozsdamentes acél edények. feltéve, fedéllel ugyanabból az anyagból. Cover, amelyre fel van szerelve a különböző berendezések. alapján a tömítés és rögzítése egy bilincs csatolt flanging mentén fermentor. Nagy és kis fermentorok el vannak látva a szükséges lyukakat a szellőztetés, a mintavétel. döntéshozatal vetőmag és hozzáadunk habzásgátlókat és élelmiszer. A hőmérséklet-szabályozás zárt fermentorokban ellátva kabátok, hengeres berendezést merítjük vízfürdőben. Ha a fermentálás a fermentor, akkor szinte mindig szükséges hozzá hab-csökkentők ezt tudjuk] nd osunhestvit automatikusan útján elektródákat. amelyek zártak, amikor a hab képződését, és tartalmaz egy mágnesszelep. Zozduh, mint a termelési környezetben. szűréssel sterilizáljuk. megnedvesítjük, majd be a feltáró keresztül buborékoltatóba. A lombikok és palackok használt kis porózus terrakotta labdákat csatolt egy üvegcsőbe. A kísérleti fermentor mindig keverővel ellátott, hogy az oxigénfelvételt a levegőből hatékonyabban. Alkalmazni süllyesztett fermentációs fermentoroknái 200 és 500 liter, és még több köbméter. [C.13]
A készítmény a virális vakcinák, szintén végzett töményítése és tisztítása a vírus felhalmozott tömeges. Release a durva szennyezéseket lehet elérni elválasztását, majd a vakcina előállítása, - a sterilizáló szűréssel vírustartalmú folyadékokat (polio vakcina). Gondos kontroll vakcinák vannak csomagolva, és használni, mint egy folyékony készítmény, vagy fagyasztva-szárítással. A perorális alkalmazáshoz-láb száraz polio vakcina van csomagolva, például, a pelletek formájában. [C.576]
Hogy előkészítse a PEG oldatot figyelembe 2 g PEG 4000-t helyezünk egy kémcsőbe, és megolvasztjuk vízfürdőn 70 ° C-on Ahhoz, hogy az olvadt PEG-et adtunk 0,4 ml dimetil-szulfoxid és 2 ml táptalajt RRM1 1640. A csövet nyitva marad, hogy a levegő ua, amíg a pH-ja az oldat nem vált alkáli (8,0- 8,5), amely lehet megítélni vagy színváltozást jelző . jelen vannak a környezetben, akár közvetlen pH-mérést. Ezt követően a meleg oldatot sterilre membránszűrőn át történő szűréssel, és tartott a kísérlet előtt egy inkubátorban 37 ° C-on [C.99]
Nem lehet tulajdonítani a közös eljárás mikroorganizmusok és a szűrés. Azonban ez annak köszönhető, hogy nincs hiány módon. de csak hangszeres nehézségeket. A módszer alapja az a képessége, féligáteresztő membránokat nagyobb pórusokat (típus mikroszűrő membránok) áramló folyékony fázis és a késleltetés (koncentrátum) mikrobiális sejtek. Ismeretes, hogy a mikro-és ultraszűrés alapvetően különbözik a hagyományos szűrő, hogy az elválasztott homogén keverékek (oldatok), és nem adnak csapadékot retentátum anyagot, és annak koncentrátum, míg a megszűrt oldatot - transz-hús - nem tartalmaz szennyeződéseket fogva membrán . Ebben az értelemben a mikrobiális sejtek. mind (szokásosan nevezik) a szilárd fázishoz. akadályozhatják membrán elválasztási eljárások. Azonban, mivel ezek viszonylag nagy mérete, összehasonlítva a pórusátmérő a membrán (450 mikron vagy ennél kisebb), akkor azok elválasztását koncentrálva, egy kellően nagy pórusú membránokon erélyes keverés közben a koncentrátum, kiküszöböli lerakódását sejtek a membránon. [C15]
Az elegyet Ficoll - urovizon kell távolítani az elhalt sejteket, 34 g Ficoll-400, és 75 ml urovizona hozzáadunk 360 ml desztillált vizet, és az elegyet sötétben, szobahőmérsékleten Ficoll oldva. az elegy sűrűségét úgy állítjuk be, hogy 1,094 vízzel, szűréssel sterilizáljuk Church n Rm sötétben, 4 ° C hőmérsékleten [c.211]
Mivel a aktivitásának meghatározására mutató antnsyvo-rotok nagyon időigényes, akkor jobb, hogy mentse fel a szérumot a három vagy négy vérzés (körülbelül 100 ml), keverjük össze, és főzzük így titráljuk reagensek sorozatával, amely lehet használni, több hónapon keresztül. Titrált antiszérumot adagolt kis részletekben, és fagyasztva tároljuk IRN - 20 „” C. Felhasználás előtt a szérum felolvasztottuk, hígítottuk, CP és adott esetben átszűrve sterilizáljuk Millipore membránon cég (USA). Hígított aitisyvorotki mozhio át 4 ° C-on két hétig. [C.226]
Ezeket az alkotórészeket, keverés közben feloldjuk I h rec szobahőmérsékleten. és 0,1. NaOH, pH = 7,0 értékre állítjuk be. Esln kell oldat sűrűsége-ját 1,077 desztillált víz hozzáadásával. A kapott keveréket FU autoklávozzuk 20 percen keresztül 110 ° C, vagy szűréssel sterilizáljuk 0,45 mikronos membránnal, és tároljuk a rec 4 ° C-on, sötétben. [C.271]
Előállítása 0,18 g aminosav alanin, 0,156 g aszparagin, aszparaginsav, 0,216 g. 0,54 g glutaminsav. 0,288 g prolin, 0,792 g nátrium-piruvát feloldunk 72 ml vízben rec hőmérséklete körülbelül 40 ° C-on, keverés közben periodikusan. Dobavliyut Ezután 0,48 ml oldatot tartalmazó B12 vitamin és a biotin (lásd. Nnzhe), szűréssel sterilizáljuk, és tárolja fagyasztással kis részletekben -20 ° C hőmérsékleten [c.293]
Előállítása 0,005 g B12-vitamin, és 0,005 biotin feloldjuk 20 ml vízben, majd hozzáadunk 0,01 ml 1 M H I, szűréssel sterilizáljuk, és ömlött 1 ml, fagyasztva tároltuk. [C.293]