Módszerek tanulmányi törlőkendő
5.1. A kötet a kutatás
5.2.1. Eljárás vetés mosófolyadékot coliform baktériumok
5.2.2. Módszerei vetés a teljes bakteriális szennyeződés
5.2.3. Módszerei vetés a St.aureus
5.2.4. Az eredmények értékelése
A jelenlegi egészségügyi felügyelet élelmiszeripari és kereskedelmi, a gyermekek és az egészségügyi intézmények törléssel végzett tanulmány jelenlétében coliform baktériumok.
Egy tanulmány jelenlétében St.aureus, nemzetségbe tartozó baktériumok Rroteus, meghatározása a teljes bakteriális szennyezés által termelt indikációk. Például:
a) Tanulmány törlőkendő Staphylococcus végzett ellenőrzés krémes cukrászdák, büfék és éttermek, konyhák és egyéb tejtermékek konyhák, különös figyelmet fordít, kezében a személyzet;
b) a teljes mikrobiális szennyeződés lehet meghatározni, hogy létrehozza a hatékonyságát higiénikus edényeket a mosogatógépbe, valamint az értékelés az új mosó- és fertőtlenítő szerek.
Abban az esetben, visszavásárlásának coliform baktériumok jelentős százaléka tamponok helyben ajánlott, hogy készítsen tanulmányt mosást leltár, berendezések és a kezét a személyzet jelenlétére Enterobacteriaceae * (11).
Eljárás vetés mosófolyadékot coliform baktériumok
Amikor ütemezett egészségügyi felmérések azonosítására coliformok növénytermesztésére mosófolyadékot Kessler közepes laktózzal vagy kódot, az üveget a közeget, a tampon csökkentjük, és átvisszük a fennmaradó öblítő folyadékot.
Termesztett növények média Kessler vagy CODE inkubáljuk 37 ° C-on, 18-24 órán át a megfelelő telepítő táptalajban Kessler szilárd eltérés közegben Endo, a telepítő táptalajban CODE termelt csak változás esetén a közepes elszíneződés vagy homályosság. Az ezt követő tanulmányok, lásd. A 4.4.1.
Módszerei vetés a teljes bakteriális szennyeződés
Ahhoz, hogy megállapítsuk a teljes szennyeződés a felületek a kontrollált alanyok figyelembe tamponokat eljárással előállított, fentiekben ismertetett (a fenti 4.3.) Mielőtt vetés egy kémcsőbe, amely tartalmazza a tampont hozzáadunk 5 ml 0,1% pepton vízben vagy izotóniás nátrium-klorid-oldattal. Tampon alaposan mostuk, majd ezt követően 1,0 ml öblítő folyadékot helyezünk egy Petri-csészébe, és öntött olvadt IPA. A lemezeket inkubátorba helyeztük egy 30 ° C-on Megtekintése száma telepeket 48 óra elteltével, a végső - 72 órán át. A kinőtt kolóniák számát a lemezen, szorozva 10 hogy megállapítsuk a teljes baktériumok száma szereplő az objektum felületét.
Módszerei vetés a St.aureus
Azonosításához St.aureus Crop mosófolyadékokat hogy készítsen egy csésze ISA vagy VSA közvetlenül dörzsöli a mag mintavevő tampont ezután bemerítjük az utolsó kémcsőbe 6,5% -os fiziológiás sóoldattal húslevest. Ha szükség van, hogy azonosítsa és coliform baktériumok, továbbra is az öblítőfolyadék pipettáztunk a környezetre vagy Kessler CODE (4.4.1.).
Kimutatása egészségügyi-indikatív és feltételes kórokozó baktériumok tamponokat a felületek tiszták, képzett dolgozni tárgyak, eszközök és berendezések, valamint a kezében személyzet sérti az egészségügyi rendszer és a biztos alapot nyújt a közigazgatási.
Receptek táptalaj
6.1. Izotóniás sóoldat - 0,85% nátrium-klorid-oldattal
6.2. 0,1% -os vizes pepton (pepton víz)
6.3. Közepes meghatározására az összes aerob mezofil és
fakultatív anaerob mikroorganizmusok
6.4. Kessler közegben laktózzal
6.6. Húsleves laktóz, szarvasmarha epe és brillantzöld - ZHLB
6.7. EU-húsleves (megerősítésére a beoltás E. coli módszerével
6.8. Szerda Hiss glükózzal
6.9. Endo agar, Levin
6.10. Közepes meghatározására indoloobrazovaniya
6.11. Hottinger húsleves megemészteni annak meghatározására indoloobrazovaniya
6.12. Clark szerda
6.13. Metil vörös vizsgálat száját metil
6.14. Reagensek A Voges-Proskauer reakció
6.15. Koser citrát tápközeg
6.16. Simmons szerda
6.17. Russell szerda karbamid száraz táptalajon
6.18. Tresaharny agar el karbamiddal Olkenitskomu
6.19. só húslevest
6.20. cukor húsleves
6.21. steril tej
6.22. Tej-só agar
6.23. Sárgája só agar
6.24. tej agar
6.25. Nyúl citrát plazmát
6.26. Közepes meghatározására mannit oxidációs reakció alatt anaerob
6.27. Ploskireva média száraz táptalajon
6.28. Bizmut-szulfit agar (Wilson-Blair tápközeg)
6.29. Közepes fermentációs meghatározása maltóz
6.1. Izotóniás sóoldat - 0,85% nátrium-klorid-oldattal
Hogy izotonikus oldatot pH = 6,9-7,0 desztillált víz, pH-indikátort, amely be van jelölve bromtimolblau, amikor a hozzáadott vizet üveg színe legyen zöld. Más esetekben, vizet nem használunk. Az izotóniás oldatot öntjük kémcsövek vagy fiolák a szükséges mennyiségben, sterilizált 1 atm. 20 perc.